1. 抗体人源化的分子基础
抗体人源化是抗体药物开发的核心环节，其本质是通过蛋白质工程手段降低治疗性抗体的免疫原性。CDR移植作为最经典的人源化策略，需要精确识别并保留鼠源抗体的6个互补决定区，同时将框架区替换为最接近的人源序列。在实际操作中，研究者通常会借助IMGT数据库进行种系基因比对，选择同源性最高的人源框架。值得注意的是，成功的抗体改造往往需要在人源框架中保留部分关键的鼠源残基，这些残基主要分布在Vernier区，对维持CDR构象至关重要。
2. 亲和力成熟的技术路径
抗体亲和力优化是一个系统工程，现代实验室通常采用定向进化与理性设计相结合的策略。噬菌体展示技术因其高通量特性，成为筛选高亲和力变体的首选方法。在具体操作中，研究者会构建突变文库，重点改造CDR区，特别是CDR-H3这个最具多样性的区域。通过多轮"吸附-洗脱-扩增"的筛选过程，可获得亲和力显著提升的抗体变体。与此同时，基于结构的理性设计也越来越受重视，通过X射线🩻晶体学或冷冻电镜解析抗原-抗体复合物结构，可以精确指导关键接触残基的改造。
3. 抗体功能的多维度优化
完整的抗体工程不仅需要关注亲和力参数，还需要考虑多个功能指标：
稳定性优化：通过引入二硫键、优化疏水核心等手段提高热稳定性
免疫原性控制：采用表位预测算法消除潜在T细胞表位
表达水平提升：密码子优化和信号肽筛选可显著提高产量
全人源抗体的开发代表着抗体工程的最高水平。转基因动物平台和单B细胞克隆技术的成熟，使得直接获取全人源抗体成为可能。这类抗体完全避免了异源序列带来的免疫原性问题，在临床应用中展现出独特优势。
4. 抗体药物开发的技术演进
随着单抗人源化技术的普及，抗体药物开发进入新阶段。现代抗体工程更强调"可开发性"（developability）概念，即在早期设计阶段就综合考虑各项参数。实验室常用的评估手段包括：
分析型超速离心（AUC）检测聚集倾向
差示扫描量热法（DSC）测定热稳定性
表面等离子共振（SPR）分析结合动力学
抗体功能优化也不再局限于单一参数的提升，而是追求综合性能的平衡。例如，某些情况下适度的亲和力调控（而非最大化）反而能提高治疗效果，这体现了抗体工程正朝着更精细、更理性的方向发展。
Q1：抗体人源化过程中如何平衡免疫原性降低与活性保持？
A：当前主流采用三级优化策略：（1）基于结构生物学数据选择最适人源框架（通常VGHD或VK1亚型）；（2）通过分子动力学模拟验证CDR区构象保留度；（3）必要时引入≤5个关键回复突变。文献显示，该方法可使90%以上案例保持原始活性的85%-120%。
Q2：噬菌体展示筛选时如何避免获得假阳性高亲和力突变体？
A：建议建立三级验证体系：（1）初级筛选用低密度抗原包被（≤5μg/mL）；（2）次级验证采用溶液竞争法；（3）最终通过SPR检测动力学参数（重点关注koff值）。典型实验需设置3轮以上"严格度递增"的筛选，并使用野生型序列作为内参对照。
Q3：全人源抗体是否完全不存在免疫原性风险？
A：不完全正确。即使100%人源序列仍可能因以下因素引发免疫反应：（1）个体MHC多态性差异；（2）翻译后修饰异常（如非典型糖基化）；（3）蛋白质错误折叠产生的新生表位。
Q4：抗体热稳定性（Tm值）提升有哪些工程化策略？
A：实验室常用四步法：（1）二硫键工程（VH-VL界面Cys对引入）；（2）疏水核心残基优化（如V37I突变）；（3）表面电荷中和（计算pI接近7.0）；（4）N-glycan工程（增加Man5糖型比例）。通常可使Tm提升5-15℃（mAbs, 2023）。
Q5：如何评估抗体人源化方案的成功率？
A：建议建立三级评估标准：
分子层面：CDR区RMSD≤1.5Å（通过RosettaAntibody建模）
功能层面：ELISA结合信号≥野生型80%
物理特性：SEC单体含量＞95%，Tm≥65℃
满足上述三项指标的项目成功率可达78%
